22 En otros organismos modelo esta modificación es realizada por los llamados PRC2 (por Polycomb Repressive Complex 2) y es de espe- rar que también se encuentren en árboles frutales (Figura 4). De este modo tenemos que los genes DAM y el posible gen de protec- ción frente al frío y la desecación S6PDH comparten un mecanismo que puede ser usado para suprimir la expresión de estos genes de forma simultánea al finalizar el periodo de latencia. Evidentemente no es casualidad, sino parte de un intrincado mecanismo de regu- lación de la latencia del que todavía estamos muy lejos de conocer los detalles. Un mayor conocimiento de estos mecanismos nos ofrecerá sin duda herramientas de selección aplicable a programas de mejora de distintas especies cultivadas, pero también la posibilidad en el futuro de matizar la respuesta de nuestros árboles a los estímulos externos que influyen en la latencia y la floración, para aminorar los efectos de los vaivenes meteorológicos y el cambio climático en nuestra agricultura.• FRUTICULTURA Figura 4. Representación de las interacciones de activación (flechas verdes) y de represión (líneas rojas) entre proteínas y genes implicados en regulación de la latencia (DAM) y la síntesis de sorbitol (S6PDH). También hemos tenido ocasión de comprobar la participación de los llamados modificadores de la cromatina en la expresión de los genes DAM. Estos modificadores de la cromatina actúan cam- biando químicamente las proteínas que habitualmente se unen a los genes, mediante metilaciones, acetilaciones, fosforilaciones, etc... Estas modificaciones también afectan a la expresión de los genes, y en concreto la metilación de un aminoácido lisina en algunas de estas proteínas ha sido relacionada con la represión de los genes DAM. Esta modificación concreta, llamada H3K27me3, se produce en una región de los genes DAM con repeticiones de guanina-ade- nina (GA) en su secuencia nucleotídica (de la Fuente et al., 2015), y también se produce en una repetición GA del gen S6PDH que codi- fica la enzima de síntesis de sorbitol de la que hemos hablado antes. Agradecimientos Este estudio ha sido elaborado en el marco de proyec- tos financiados por el Instituto Nacional de Investiga- ción y Tecnología Agraria y Alimentaria (INIA)-FEDER (RF2013-00043-C02-02), y el Ministerio de Ciencia e Innovación (AGL2010-20595). Referencias • Bielenberg,D.G.,Wang,Y.,Li,Z.,Zhebentyayeva,T.,Fan,S.,Reighard,G.L.,Scorza,R.,Abbott,A.G.2008.Sequencingandannotationof the evergrowing locus in peach (Prunus persica [L.] Batsch) reveals a cluster of six MADS-box transcription factors as candidate genes for regulation of terminal bud formation. Tree Genetics & Genomes 4: 495-507 • delaFuente,L.,Conesa,A.,Lloret,A.,Badenes,M.L.,Ríos,G.2015.Genome-widechangesinhistoneH3lysine27trimethylationasso- ciated with bud dormancy release in peach. Tree Genetics & Genomes 11: 45 • Lloret,A.,Badenes,M.L.,Ríos,G.2018.Modulationofdormancyandgrowthresponsesinreproductivebudsoftemperatetrees. Frontiers in Plant Science 9: 1368 • Lloret,A.,Martínez-Fuentes,A.,Agustí,M.,Badenes,M.L.,Ríos,G.2017.Chromatin-associatedregulationofsorbitolsynthesisinflower buds of peach. Plant Molecular Biology 95: 507-517 • Niu,Q.,Li,J.,Cai,D.,Qian,M.,Jia,H.,Bai,S.,Hussain,S.,Liu,G.,Teng,Y.,Zheng,X.2016.Dormancy-associatedMADS-boxgenesand microRNAs jointly control dormancy transition in pear (Pyrus pyrifolia white pear group) flower bud. Journal of Experimental Botany 67: 239-257 • Ríos,G.,Tadeo,F.R.,Leida,C.,Badenes,M.L.2013.Predictionofcomponentsofthesporopolleninsynthesispathwayinpeachbygeno- mic and expression analyses. BMC Genomics 14: 40 • Sasaki,R.,Yamane,H.,Ooka,T.,Jotatsu,H.,Kitamura,Y.,Akagi,T.,Tao,R.2011.FunctionalandexpressionalanalysesofPmDAMgenes associated with endodormancy in Japanese apricot. Plant Physiology 157: 485-497